Herstellung von Chromatographie Sprühreagenzien

Alphabetische Suche nach TLC Visualisierung Spray Reagenzien

Chloranil Reagenz (Tetrachlor-p-benzochinon) zur Detektion von Phenolen
Spray mit einer Lösung von 1 g Tetrachlor-p-benzochinon in 100 ml Toluol
Chlor / o-Tolidin Für den Nachweis von Chloramin bildenden Verbindungen, z.B. Harnstoffderivate, carbamated, Antibiotika
Lösung I: Man löst 160 mg o-Tolidin in 30 ml Eisessig, fügen Sie 500 ml destilliertem Wasser, und fügen Sie 1gm KI
II Lösung: gesättigte Lösung von o-Tolidin in verdünnten Essigsäure mit 0.85gm KI zugegeben.
Chloramin-T
Man löst 5 g des Reagens und 0,5 g Natriumhydroxid in 100 ml Wasser.
Für den Nachweis von phenolischen Verbindungen.
Cupriacetat
Löse 3GM Kupferacetat und 15mls Phosphorsäure in Wasser 85mls ..
Für Prostaglandine zu detektieren.
Kupfersulfat / Phosphorsäure als Reagenz für die Verkohlung Polymer gebunden TLC-Platten.
Spray mit einer Lösung von 10 g Kupfer (II) sulfat 10 ml Phosphorsäure in 90mls Wasser.
Beheizen 5-30min bei 110 ° C
Sehen Sie alle paar Minuten, um zu sehen, ob farbig oder fluoreszierende Flecken bei 254 und 360 nm erscheinen.
Spots wird braun, grau oder schwarz.
Siehe Chromsäure unter Kaliumdichromat / Schwefelsäure
a-Cyclodextrin
Man löst 1 g des Reagens in 100 ml Ethanol.
Unterscheidet sich von ungesättigten Lipiden gesättigt.

DDQ Reagent (Dichlordicyanobenzochinon) zur Detektion von Phenolen
Spray mit einer Lösung von 2 g 2,3-Dichlor-5,6-dicyano-1,4-benzochinon in 100 ml Toluol
2 Dichlorfluorescein
Löse 0.2gm des Reagens in 100 ml Ethanol.
Bei gesättigten und ungesättigten Lipiden zu detektieren.
Dichlorofluorescein Für den Nachweis von Süßstoffe Saccharin und Cyclamat
Lösen 0.2gm von Dichlorofluorescein in 100 ml Ethanol
Spray und trocken mit warmer Luft.
Blick unter 360 nm UV-Licht
Dichlorfluorescein / Fluorescein-Natriumsalz Zur Detektion von N-substituierten Barbiturate
Spray mit einer Lösung von 0.1gm Dichlorofluorescein in 100 ml Ethanol
Dann Spray mit einer Lösung von 0.1gm Fluorescein-Natriumsalz in 100 ml Ethanol
2,6-Dichlorchinon -4- chlorimid Für den Nachweis von Antioxidationsmittel, Phenole, Amine, aromatische Kohlenwasserstoffe, Pharmazeutika, Phenoxyessigsäure Herbiziden, usw.
Spray mit einer frisch hergestellten Lösung von 1,0 g 2,6-Dichlorchinon-4-chlorimid in 100 ml Ethanol.
Wärme 10min bei 110 ° C und Behandlung mit Dampf NH3
p-Dimethylaminobenzaldehyd (Ehrlich-Reagens). Für den Nachweis von Sulfonamiden, Amine, Indolen und Ergotalkaloide
Man löst 1 g p-Dimethylaminobenzaldehyd in 50 ml Salzsäure und 50 ml Methanol hinzu
Wärmeplatten für 20 min bei 50 ° C
4- Dimethylaminozimtaldehyd Für Indole detektieren.
Löse 0.2gm des Reagenz in 80 ml Ethanol und 20 ml konz. HCl.
N, N-Dimethyl-p-phenylendiamin-Dihydrochlorid Für organische Peroxide zu detektieren.
Man löst 1 g des Reagens in 80 ml Methanol und 20 ml konz. HCl.
Diphenylhexatrien für Lipide erkennen.
Löse 0.03gm des Reagens in 100 ml Chloroform.
2, 4-Dinitrophenylhydrazin Für den Nachweis von Aldehyden und Ketonen
Sprühplatte mit einer Lösung von 0,4 g 2,4-DNPH in 100 ml 2N Salzsäure, 1ml Ethanol
Beachten Sie gelb-rote Flecken.
Diphenylamin Zur Detektion von Glykosiden, Glycolipide
Man löst 5 g Diphenylamin in 50 ml Ethanol, fügen Sie 40 ml konz. HCl und 10 ml Eisessig
Spray und die Deckplatte mit einer anderen Glasplatte, Wärme 30-40min bei 110 ° C bis Fleck erscheinen
Glycolipide produziert blaue Flecke.
S-Diphenylcarbazon Zum Nachweis von Barbituraten
Spary mit einer Lösung von S-Diphenylcarbazon 0.1gm in Ethanol
Barbiturate geben lila Flecken
Diphenylcarbozone / Mercuric Sulfat Zum Nachweis von Barbituraten.
DPC ist 0,01% in Chloroform. Quecksilbersulfat 0,01% in verdünnten Schwefelsäure.
2,2-Diphenylpicrylhydrazyl Für den Nachweis von Aldehyden und Ketonen
Man löst 15 mg 2,2-DPPH in 25ml Chloroform
Spray, Hitze 5-10 Minuten bei 110 ° C
Gelbes Flecken auf einem lila Hintergrund.
Dithizon Für den Nachweis von Schwermetallionen
Man löst 20 mg Dithizon in 100 ml Aceton, zu speichern in einer braunen Flasche in einem Kühlschrank
Spray mit Dithizonlösung
Spray mit 25% iger Ammoniaklösung
Dittmer und Lester Siehe Molybdänblau
Dragendorff-Reagenz. Zum Nachweis von Alkaloiden und quartären Stickstoffverbindungen
Löse 0.11gm Kaliumiodid und 0.18gm Bismutsubnitrat (OBiNO3) in 20mls Essigsäure und machen auf 100 ml auf.

Erhlich Reagenz Siehe p-Dimethylaminobenzaldehyd
Äthanolamin diphenylborate (Flavon-Reagenz nach Neu) zur Detektion von Flavonoiden
1. Man löst 1 g Ethanolamin in 100 ml Methanol diphenylborate
2. Man löst 5 g polyyethylene Glykols in 100 ml Ethanol
Spray mit Lösung 1, dann Lösung 2. Beachten Sie bei 365 nm UV-Licht
Erhlich Reagenz Siehe p-Dimethylaminobenzaldehyd
Emerson Reagenz Siehe 4-Aminoantipyrin / Kalium-hexa-Cyanoferratkomplexen (III)

Gentian Violet / Brom Für den Nachweis von Lipiden
Spray 0.1gm Gentianaviolett (Kristallviolett) in 100 ml Methanol auf der Platte und in einem Tank mit Bromdampf.
Suchen Sie nach blauen Flecken auf einem gelben Hintergrund.
Gibbs Reagens zum Nachweis von Phenolen.
Löst 3GM von 2,6-Dibrom-N-chlor-p-benzochinon Imin in 100 ml Methanol.
HPT-Reagenz für Gallensäuren zu detektieren.
Löst 0.025gm von 8-Hydroxy-1,3,6-pyrenetrisulphonic-Trinatriumsalz in 100 ml Methanol.

Hydroxylamins / Eisen (III) -chlorid zur Detektion von Amiden, Lactonen, Carbonsäureestern und -anhydriden
Lösung I: Eine Lösung aus 7 g Hydroxylammoniumchlorid in 100 ml Methanol und eine Lösung von 7,2 g Kaliumhydroxid in 100 ml Methanol aufgefüllt. Das Vermischen der beiden Lösungen zusammen und filtern.
Lösung II: Man löst 2 g Eisen (III) -chlorid und 1 ml konz. HCl in 100 ml Wasser.
Trockenplatte in Luft
Spray mit Lösung I, dann mit Lösung II

Iodplatinat Zur Detektion Alkaloide, Amine und organische Stickstoffverbindungen.
Löst 0.15gm Kaliumchlorplatinat und 3GM Kaliumjodid in 100 ml verdünnte Salzsäure.
Iodoplatinic Säure zur Ermittlung von Alkaloiden, Kokain-Metaboliten, Amine, Analgetika und Biotin.
Man löst 3 ml. von Chloroplatinsäure (Hydrogenhexachloroplatinat) in 100 ml. Wasser, dann mit einer Lösung von 6GM Kaliumjodid in 100 ml Wasser mischen.
Eisen (III) -chlorid / Kaliumhexacyanoferrat / Natriumarsenat (nach Patterson Clement)
Für den Nachweis von Jodverbindungen, e..g. Schilddrüsenhormone
Lösung I: Man löst 2.7gm Eisen (III) -chlorid-Hexahydrat in 100 ml 2N-Salzsäure
Lösung II: Man löst Hexacyanoferrat 3.5gm Kalium in 100 ml Wasser
Lösung III: 3,8 g Arsentrioxid in 25ml 2N Natronlauge leicht Abkühlen auf 5 ° C auflösen Heizung und 50 ml 2N Schwefelsäure hinzuzufügen, füllt sich mit Wasser auf 200 ml
Unmittelbar vor 5 ml Lösung Nutzungsmix I, 5 ml Lösung II und 1 ml Lösung III
Isatin Zur Detektion Prolin, Hydroxyprolin und anderen Aminosäuren und Peptide.
0.2gm Isatin in 100 ml Methanol.

Bleitetraacetat / 2,7-Dichlorfluorescein zum Nachweis von vicinalen Diolen, Glykoside und Phenolen, z.B. Zuckersäuren
Lösungen:
1. 2 g Bleitetraacetat in 100 ml Eisessig
2. 1 g 2,7-Dichlorfluorescein in 100 ml Ethanol
Mische je 5 ml Lösung 1 und 2 bilden und bis zu 200 ml mit trockenem Toluol. Diese Reagenz Lösung ist nur etwa 2 Stunden stabil.

Ninhydrin Zur Detektion von Aminosäuren, Aminen, Aminozuckern (Amphetamine).
Lösen 0.2gm Ninhydrin in 100 ml Ethanol, oder in 94 ml Wasser und 6 ml Aceton.
Spray und Wärme auf 110 ° C bis rötliche Flecken erscheinen.
Ninhydrin-Reagenz Fixierer
Angesäuertem Ethanol, enthaltend 1% gesättigte Kupfernitrat.
Fixative Chromatogramme für Ninhydrin.
Ninhydrin / Cadmiumacetat Für den Nachweis von Aminosäuren und heterocyclische Amine
Man löst 1 g Ninhydrin und 2,5 g Cadmiumacetat in 10 ml Eisessig und füllt mit Ethanol auf 500 ml.
Spray und Wärme 20min bei 120 ° C
Rot, rosa oder lila Flecken zu sehen sind.
Ninhydrin / Pyridin / Eisessig Zur Detektion von Peptiden
Spray mit einer Lösung von 1 g Ninhydrin in 95mls Pyridin und 5 ml Eisessig.
Wärme 5 min bei 100 C
Salpetersäure / Ethanol Zur Detektion von Aminen und Alkaloiden
Spray mit einer Lösung von 50 Tropfen konz. Salpetersäure in 100 ml Ethanol. Falls erforderlich, Wärme auf 120 C für einige Zeit.
N-4-Nitrobenzyl-N-n-Propylamin-Hydrochlorid (NBPA)
0,2 Millimol Reagenzes
Für den Nachweis von Isocyanaten.

1. Orcinol Ferric Chloride (Bials Reagens)
Zum Nachweis Zucker, Glykoside und Sulfolipiden.
Löse 0.9gm Ferrichlorid und 0.55gm Orcinol in 80mls Ethanol und 20 ml HCl.
2. Orcinol (Bials Reagens)
Zur Detektion von Glykosiden, Glycolipide
Man löst 0,1 g Orcin in 40.7ml konz. HCl, 1ml 1% Eisen (111) -chlorid, und mit Wasser auf 100 ml
Spray und Wärme bei 80 ° C für 90 Minuten.
Glycolipide erzeugen violet Flecken.
Oxim (8-hydroxychinolin)
Man löst 0,25 g in 8o ml Etanol und 20 ml Wasser
Für den Nachweis von Kationen, Al, Cr, Fe, Co, Ni, Mn, Zn.

Rhodamin B
Zum Erfassen Lipide und
Bei Metallen (Au, Bi, Cd, Fe, Hg, Mo, Ti, V und W) Detektieren
Löst 0.25gm Regent in 100 ml Ethanol oder Aceton.
Platzieren der besprühten Chromatogramme in einer Ammoniakatmosphäre, erhöht die Empfindlichkeit.
Rhodamin 6G
Zum Erfassen Lipide.
Man löst 0,01 g Rhodamin 6G in 100 ml Methylenchlorid.
1. Rubeanwasserstoffsäure (Natrium dithioxide)
Für den Nachweis von Kationen gb111A und 111B
Man löst 1 g-Reagenz in 100 ml Ethanol.
2. Rubeanwasserstoffsäure zur Detektion von Schwermetallionen
Spray mit einer Lösung von 0,5 g Rubeanwasserstoffsäure in 100 ml Ethanol
kurz antrocknen
Spray mit 25% iger Ammoniaklösung oder in einer Kammer mit Ammoniakdampf

Tetracyanoethylen - TCNE Reagens zum Nachweis von aromatischen Kohlenwasserstoffe und Heterocyclen, aromatische Amine, Phenole und
Man löst 0,5 - 1,0 g Tetracyanethylen in 100 ml Dichlormethan oder Toluol.
Hitze bei 100 ° C für eine kurze Zeit.
Tetranitrodiphenyl Zur Detektion von Herzglykosiden
I-Lösung: gesättigte Lösung von 2,3’ , 4,4'-tetranitrodiphenyl in Toluol
Lösung II: Man löst 10 g Kaliumhydroxid 50 ml Wasser und 50 ml Methanol
Spray mit Lösung I, trocken bei Raumtemperatur, dann sprühen mit Lösung II.
Blaue Flecken beobachtet.
Tetrazolblau Für den Nachweis von Kortikosteroiden und anderen reduzierende Verbindungen.
Lösung 1 0,5 g Tetrazolium blau 50ml Wasser auflösen und 50 ml Methanol.
Lösung II. Make-up 100 ml 6M NaOH.
Spray mit einer gleichen Mischung beiden Lösungen.
Violette Flecke bei Raumtemperatur oder unter leichtem Erwärmen.
Thymol / Schwefelsäure zur Detektion von Zuckern
Spray mit einer Lösung von 0,5 g Thymol in 95 ml Ethanol und 5 ml konz. Schwefelsäure mit Vorsicht.
Wärme 15-20min bei 120 ° C
Sugars zeigen rosa Flecken.
Zinn (IV) -chlorid Zur Detektion von Triterpenen, Sterole, Steroide, Phenole und Polyphenole
Spray mit 10 ml Zinn (IV) -chlorid in 80 ml Chloroform und 80 ml Eisessig.
Erwärmen, um die Schicht für 5-10 Minuten bei 100 ° C und untersuchen in sichtbarem und langwelligen UV-Licht.
TNF-Reagenz (Trinitrofluorenon) zur Detektion von Phenolen
Spray mit einer Lösung von 2 g 2,4,7-Trinitrofluorenon in 100 ml Toluol
o-Tolidin, diazotiert Für den Nachweis von Phenolen
Tolidinlösung - Make up 5g o-Tolidin und 14ml konz. Salzsäure in 100 ml Wasser
Nitratlösung - Löse 10 g Natriumnitrat in 100 ml Wasser, frisch zubereitet
Mischte 20ml Tolidin-Lösung und 20 ml Nitratlösung bei 0 ° C unter ständigem Rühren.
Die Sprühlösung ist für etwa 2-3 Stunden stabil.
Hinweis: Nach dem Aufsprühen mehrere Stunden dauern kann, bis farbigen Flecken gebildet werden.
p-Toluensulfonsäure Zum Nachweis von Steroiden, Flavonoide und Catechine
Man löst 20 g von p-Toluolsulfonsäure in Chloroform und erhitzt einige Minuten bei 100 ° C.
Inspizieren unter langwelligen UV-Licht.
Trichloressigsäure Zum Nachweis von Steroiden, Digitalis-Glykosiden, Alkaloiden veratrum und Vitamin D
Sprühlösung I: 25GM von Trichloressigsäure in 100 ml Chloroform auflösen.
Sprühlösung II - für die Vitamin-D - Man löst 1 g Trichloressigsäure in 100 ml Chloroform.
Sprühlösung III - für Digitalis-Glykosiden - 3,3 g Trichloressigsäure in 100 ml Chloroform auflösen und füge 1-2 Wasserstoffperoxid abfällt.
Spray mit den entsprechenden Lösung, Hitze 5-10 Minuten bei 120 ° C und bei normalen Licht und langen UV-Licht beobachtet.
Überprüfen Sie die Flecken bei Tageslicht und im langwelligen UV-Licht.
Trifluoressigsäure Zum Nachweis von Steroiden
Spray mit einer Lösung von 1 g Trifluoressigsäure in 100 ml Chloroform und Wärme 5min bei 120 ° C
Triethanolamine Zur Verstärkung der Fluoreszenz Spezies
Man löst 20 g des Reagens in 100 ml Isopropanol
Wolframatophosphorsäure Siehe unter Phosphowolframsäure

Ultraviolettes Licht - Fluoreszenz Untersuchen das getrocknete Chromatogramm sowohl unter 254 und 360 nm UV-Licht.
Ultraviolettes Licht - Abschrecken Für den Nachweis von verschiedenen Verbindungen, die UV-Licht absorbieren 254nm
Diese Wellenlänge Licht erscheint als dunkle Flecke gegen eine grüne oder weiße Fluoreszenz, die durch die UV-Aktivierung des fluoreszierenden Indikators in der Platte verursacht werden.
Harnstoff / Chlorwasserstoffsäure zur Ermittlung von Zuckern
Spray mit einer Lösung aus 5 g Harnstoff in 20 ml 2 M Salzsäure, mit 100 ml Ethanol versetzt und Wärme auf 100 ° C.
Ketosen und Oligosaccharide Ketosen mit blau.